1．1 實驗內容： 

厭氧菌的分離、培養及鑒定； 

1．2 目的： 

1 掌握厭氧菌的分離、培養及活菌計數的一般方法。 

了解厭氧菌菌鑒定的一般方法。 

2 復習并鞏固平時所學的微生物知識與技能。 

3 培養獨立思考、設計和動手實驗的能力。 

 

二 介紹： 

厭氧微生物在自然界分布廣泛，種類繁多，其生理作用日益受到人們的重視。 

專性厭氧菌，對氧氣非常敏感，因此，他們的分離、培養及活菌計數的關鍵是提供無氧和低氧化還原電勢的培養環境。 

 

厭氧菌的培養： 

在培養厭氧菌時，zui需要控制的是厭氧條件，在pH=7.0,O2的濃度與1atm的氧平衡時，O2——O2-反應的電位是0.81V，因此，在-0.33V時，O2濃度是大氣壓中O2濃度的10-75。每升飽和了空氣的水中含有1.48×10-55個O2。所以說，要保證厭氧菌培養時的低電位是很重要的。 

厭氧菌的培養方法很多，如厭氧箱法、厭氧袋法、厭氧罐法。這些方法都需要特定的除氧措施，操作步驟多，較繁瑣。本實驗介紹的是一種簡便的試管培養法——亨蓋特厭氧滾管技術，亨蓋特厭氧滾管技術是美國微生物學家亨蓋特于1950年提出并應用于瘤胃厭氧微生物研究的一種厭氧培養技術 因此他是世界上*個分離純化厭氧菌的人。 

以后這項技術又經歷了幾十年的不斷改進，從而使亨蓋特厭氧技術日趨完善，并逐漸發展成為研究厭氧微生物的一套完整技術，而且多年來的實踐已經證明它是研究嚴格、專性厭氧菌的一種極為有效的技術。該技術的優點是：預還原培養基制好后，可隨時取用進行試驗；任何時間觀察或檢查試管內的菌種都不會干擾厭氧條件。 

 

三 實驗材料與設備： 

3．1 分離與培養： 

3．1．1菌種：待測樣品； 

3．1．2 培養基：改良的PRAS培養基(氮素自加） 

[配方組成——NH4CL 1g,MgCl2 0.1g,K2HPO4 0.4g,KH2PO4 0.2g,甲酸鈉5g,乙酸鈉5g,甲醇3.5ml,Ph值為7.0,蒸餾水1000ml,1%的樹脂刃天青（還原指示劑）1ml,121攝氏度滅菌20min.使用前每5ml培養基加入1%Na2S（還原劑）和5%NaHCO3及3000u/ml青霉素液（抑制劑）各0.1ml] 

3．1．3 試劑：冰塊 Na2S NaHCO3 

3．1．4 器材：高純氮氣 厭氧管 厭氧手套箱 注射器 恒溫培養箱 銅柱除氧系統 定量加樣器 厭氧罐 超聲波破碎儀 酒精燈 冰塊 水浴鍋 記號筆 振蕩器 等 

3．2 菌種的鑒定： 

3．2．1 菌種：待測菌 

3．2．2 培養基；糖發酵培養基、蛋白胨水培養基、淀粉培養基（液體）； 

3．2．3 試劑；乙醚 吲哚試劑 盧戈氏碘液； 

3．2．4 器材：超凈工作臺 恒溫培養箱 高壓蒸汽滅菌鍋 接種環 移液管載玻片 顯微鏡 等 

 

四、實驗方法與步驟： 

4．1分離與培養 

4．1．1 銅柱系統除氧 

銅柱是一個內部裝有銅絲或銅屑的硬質玻璃管。此管的大小為40～400mm，兩端被加工成漏斗狀，外壁繞有加熱帶，并與變壓器相連來控制電壓和穩定銅柱的溫度。銅柱兩端連接膠管，一端連接氣鋼瓶，另一端連接出氣管口。由于從氣鋼瓶出來的氣體如N2、CO2 和H2等都含有微量O2，故當這些氣體通過溫度約360℃的銅柱時，銅和氣體中的微量O2化合生成CuO，銅柱則由明亮的黃色變為黑色。當向氧化狀的銅柱通入H2時，H2與CuO中的氧就結合形成H2O，而CuO又被還原成了銅，銅柱則又呈現明亮的黃色。此銅柱可以反復的使用，并不斷起到除氧的目的。當然H2源也可以由氫氣發生器產生。 

 

4．1．2 預還原培養基及稀釋液的制備 

在無氧無菌的超凈厭氧手套箱中的條件下，制作預還原培養基及稀釋液時，先將配置好的培養基和稀釋液煮沸驅氧，而后用半定量加樣器趁熱分裝到螺口厭氧試管中，一般瓊脂培養基裝4.5～5.0mL，稀釋液裝9mL，并插入通N2氣的長針頭以排除O2。此時可以清楚的看到培養基內加入的氧化還原指示劑—刃天青由藍到紅zui后變成無色，說明試管內已成為無氧狀態，然后蓋上螺口的丁烯膠塞及螺蓋，于滅氧罐中滅菌備用。 

 

4．1．3 分離 

（1）編號 

取五支無菌水試管，分別用記號筆標明10-1、10-2……10-5。 

（2）稀釋 

在無氧無菌的超凈厭氧手套箱中的條件下，用無菌注射器吸取1mL混合均勻的液體樣品，加入裝有預還原生理鹽水的厭氧試管中，用震蕩器將其混合均勻，制成10-1稀釋液。用無菌注射器吸取1mL10-1稀釋液至另一裝有9mL生理鹽水的厭氧試管中，制成10-2稀釋液。依此進行10倍系列稀釋，至10-6，制成不同樣品稀釋液。通常選10-4、10-5、10-6三個稀釋度進行滾管計數。 

（3）滾管分離 

1）滾管 

將無氧無菌的瓊脂培養基在沸水浴中溶化，置46-50℃恒溫的水浴中，待用，當培養基從瓶中取出時，要用N2在培養基內中充氣。再在試管中用N2充氣，趕走所有管內空氣，然后把培養基加入管內，立即塞上瓶塞。待瓶塞塞入管內，及時拔出充氣針頭。用無菌注射器吸取10-4、10-5、10-6三個稀釋度各0 .1mL，分別注入待用的試管中，然后將其平放于盛有冰水的瓷盤中迅速滾動，帶菌的溶化瓊脂在試管內壁會即刻形成凝固層。 

2）分離純化 

生成的菌落需挑取出來，鏡檢其形態及純度。如尚未獲得純培養物，需再次稀釋滾管，并再次挑取菌落，直至獲得純培養物為止。待挑取的單菌落預先在放大鏡下觀察確定，做好標記。然后將培養基試管固定于適當的支架上，打開試管膠塞，同時迅速將氣流適當、火焰滅過菌的氮氣長針頭插入管內。同時，另一液體厭氧管去掉膠塞插入另一滅過菌的通氣針頭。將準備好的彎頭毛細管小心插入固體培養基內，找準待挑菌落，輕輕吸取，轉移至液體試管內，加塞。37℃培養，培養24h或更長時間或待培養液混濁后檢查已分離培養物的純度。 

3）劃線分離 

將試管橡皮塞的一端在火焰上灼燒一下，挨著打氣針塞住管口，在針頭快速取下前，通氣15-20s，管口一端在火焰上燒片刻。旋緊管塞，劃線后的卷管直立保溫，使用CO2:H2=80:20,因為CO2比空氣重，開啟后管塞不致有空氣殘留。劃線后的滾管，置34-37度下培養，便可長出菌落。 

 

4．1．4 鏡檢與計數 

（1）鏡檢 

挑取特征性菌落制片，革蘭氏染色后鏡檢，觀察菌體形態。 

（2）計數 

液體純培養物經系列稀釋后，按上述滾管法培養。然后對固體滾管計數，計算每克或每毫升樣品中含有厭氧菌數量cfu/g（mL）樣品=A×10ml×X/10×D 

A-0.1mL滾管計數的實際平均值； 

X- 鏡檢呈現為厭氧菌的數目； 

X/10-菌落中厭氧菌的概率； 

D- 稀釋倍數 

 

4．2 菌種的鑒定 

4．2．1糖發酵試驗 

糖發酵實驗是zui常用的生化反應，在腸道細菌鑒定上尤為重要。絕大多數細菌都能利用糖類作為碳源和能源，但是它們在分解糖的能力上有很大差異，有些細菌能分解糖并產酸（如乳酸、醋酸、丙酸等）和氣體（如氫、甲烷、二氧化碳等）；有些細菌只產酸不產氣。例如大腸桿菌能分解乳糖和葡萄糖產酸并產氣；傷寒桿菌能分解葡萄糖產酸不產氣，不能分解乳糖；普通變形桿菌分解葡萄糖產酸產氣，不能分解乳糖。酸的產生可以利用指示劑來斷定。在配制培養基時預先加入溴甲酚紫[pH5.2(黃色)—6.8（紫色）]，當發酵產酸時，可使培養基由紫色變為黃色。氣體的產生可由發酵管中倒置的德漢氏小管中有無氣泡來證明。 

具體實驗步驟： 

① 將菌液進行適當稀釋，之后在無菌環境下，取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中，用無菌封口膜封口。 

② 將接種后的鑒定管放入厭氧罐中，充足氮氣后放入37℃恒溫培養箱培養。 

③ 24h后觀察各管中液體顏色變化及產氣情況。 

4．2．2 蛋白質分解實驗 

① 將菌液進行適當稀釋，之后在無菌環境下，取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中，用無菌封口膜封口。 

② 將接種后的鑒定管放入厭氧罐中，充足氮氣后放入37℃恒溫培養箱培養。 

③24h后各管分別進行米倫氏反應、吲哚反應、黃色反應和坂口反應等。 

4．2．3 淀粉水解實驗 

① 將菌液進行適當稀釋，之后在無菌環境下，取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中，用無菌封口膜封口。 

② 將接種后的鑒定管放入厭氧罐中，充足氮氣后放入37℃恒溫培養箱培養。 

③ 24h后于各管中加入適量盧戈氏碘液觀察淀粉的水解情況。 

 

五 注意事項及注釋： 

1 注射器在使用前必須經過121℃、20min滅菌。 

2 注意無菌操作，保持手和培養管的清潔。每次接種前需用酒精棉球將厭氧管蓋子擦一遍。 

3 用注射器吸取菌懸液注入固體培養基后，如需再次吸取，應快速將注射器插入厭氧管中，以防止針頭污染。 

4樹脂刃天青（resazurin）既是還原劑又是指示劑，它可以把培養基中殘留的溶解氧去除，其氧化還原電位指示敏感范圍為-42mV。有氧時呈紫色或粉紅色，無氧時呈無色（培養基的顏色），它是較為理想的氧化還原電位指示劑和培養嚴格厭氧菌*的。 

5培養基中加入的青霉素是用來抑制其它細菌生長的，因為厭氧菌的細胞壁成分為假肽聚糖，不受青霉素影響。 

6注射器在使用前必須先用培養基上面的氣體沖洗、填充，然后插入培養基的下層，以保證當培養基移入試管時，就處于無氧氣體層的下面。